細胞番号 : 細胞名
HPS0354 : 585A1
update : 2024/08/14
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| 細胞特性(Comment:英) | Human iPS cell line derived from a healthy individual (peripheral blood). Established with episomal vector. Oct3/4, Sox2, Klf4, L-Myc, Lin28 and shRNA against p53 were used for establishment. Cryopreserved by vitrification method. |
| 細胞特性(日) | 健康人由来iPS細胞株。末梢血にエピソーマルベクター ( pCXLE )によりヒト6因子（Oct3/4, Sox2, Klf4, L-Myc, Lin28, p53に対するshRNA）を導入して樹立。ガラス化法（Vitrification法）、保存。 |
| 細胞特性(寄託者記述:英) | |
| 細胞特性(寄託者記述:日) | |
| 使用条件(英) | 1) The RECIPIENT belongs to a not-for-profit academic organization (i.e., a university or another institution of higher education or any nonprofit scientific or educational organization, including government agencies). 2) In publishing research results obtained by the use of the BIOLOGICAL RESOURCE, a citation of the literature ref. (Stem Cells. 2013;31:458-466) designated by the DEPOSITOR is required. 3) Attach Appendix to MTA. |
| 使用条件(日) | 1) 利用者は学術機関に所属している者に限る。2) 利用者は、研究成果の公表にあたって寄託者の指定する文献 (Stem Cells. 2013;31:458-466)を引用すること。3) 別紙1を提供同意書に添付すること。 |
| 備考(英) | |
| 備考(日) | |
| 提供申込書類(英) |
Order Form(C-0042.pdf)
MTA(C-0007.pdf)
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Regarding MTA between user institutions and RIKEN BRC, there are two kinds of MTA, not-for-profit academic purpose (C-XXXX) and for-profit research purpose (C-XXXXp) , depending on the sort of user institutions and the purposes of use. Please use an appropriate MTA(to see). In relation to commercial use and use for patent filing, first of all Please contact RIKEN BRC (cellbank.brc@riken.jp).
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| 提供申込書類(日) |
依頼書C-0041.pdf
同意書(非営利学術目的)C-0003.pdf
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提供同意書は、使用機関の種類や目的に応じて、非営利学術目的 (C-XXXX) と営利目的 (C-XXXXp) の2種類があります。該当する提供同意書をご使用ください（詳細）。特許等の取得及び商業利用等は事前に必ず cellbank.brc@riken.jp までご連絡ください。
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| 提供手数料 |
手数料とお支払いについてはこちらをご覧ください。 |
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細胞基本情報
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寄託者 |
Yamanaka, Shinya
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| 寄託日 |
2013
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| 動物種 |
_human
< Mammals
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| 属名 |
Homo
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| 種名 |
sapiens
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| 人種 |
Japanese
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| 性別 |
Male
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| 齢 |
30s
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| 採取組織 |
peripheral blood
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| 細胞分類 |
iPS
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| 遺伝子改変 |
recombinant
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| 外来遺伝子 |
Oct3/4, Sox2, Klf4, L-Myc, Lin28, shp53
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| 外来遺伝子（ベクター） |
pCXLE
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細胞寿命 |
infinite
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| 細胞形態 |
ES-like
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| Cellosaurus(Expasy) |
CVCL_DQ06
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細胞培養・検査情報
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寄託時情報 |
ロット情報 |
| 培地・試薬情報 |
培地・試薬一覧はこちらをご覧ください。 |
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培養形態 |
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Adherent cells
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| 培地 |
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Primate ES Cell Medium + 4ng/ml human basic FGF
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| 抗生物質 |
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Free
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継代方法 |
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0.25% Trypsin + 0.1% collagenase type IV + 20% KSR + 1mM CaCl2 + PBS(-)
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| 培養容器のコーティング |
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0.1% gelatin coated dish
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継代密度 |
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1 : 3-6 split
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| 継代・培地交換頻度 |
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Subculture : once/4-6 days, Medium Renewal : every day
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| 培養最適温度 |
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37
℃
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| 二酸化炭素濃度 |
|
5
%
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| フィーダー細胞 |
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SNL 76/7
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| フィーダー細胞の処理方法 |
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X-rays 5000R (or MMC)
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| フィーダー細胞の播種数 |
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1.5-2.5 x 10 6 cells/100 mm dish
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| 凍結培地 |
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DAP213 : Medium + 2M DMSO + 1M Acetamide + 3M Propyleneglycol
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| マイコプラズマ/アコレプラズマ |
|
(-)
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| ウィルス（HIV) |
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Undetected
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| ウィルス（HTLV-1) |
|
(-)
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| 染色体検査 |
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46,XY[20] at passage No. 16
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| 個体識別検査 |
|
OK
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| 画像情報 |
寄託時情報 | ロット情報 |
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| その他の細胞情報 |
寄託時情報 | ロット情報 |
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| 文献情報 |
Reference(英) |
2件
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| Reference(日) |
0件
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| 利用者成果(英) |
7件
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| 利用者成果(日) |
0件
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| Reference(英) |
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20937
Tsujimoto H, Katagiri N, Ijiri Y, Sasaki B, Kobayashi Y, Mima A, Ryosaka M, Furuyama K, Kawaguchi Y, Osafune K.
In vitro methods to ensure absence of residual undifferentiated human induced pluripotent stem cells intermingled in induced nephron progenitor cells.
PLoS One
2022
17(11)6:e0275600
PubMed ID: 36378656
DOI: 10.1371/journal.pone.0275600
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4001
Okita K, Yamakawa T, Matsumura Y, Sato Y, Amano N, Watanabe A, Goshima N, Yamanaka S.
An efficient nonviral method to generate integration-free human-induced pluripotent stem cells from cord blood and peripheral blood cells.
Stem Cells
2013
31:458-66
PubMed ID: 23193063
DOI: 10.1002/stem.1293
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| 利用者成果(英) |
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21938
Okano M, Yasuda M, Shimomura Y, Matsuoka Y, Shirouzu Y, Fujioka T, Kyo M, Tsuji S, Kaneko K, Hitomi H.
Citrin-deficient patient-derived induced pluripotent stem cells as a pathological liver model for congenital urea cycle disorders.
Mol Genet Metab Rep
2024
40:101096
PubMed ID: 38872960
DOI: 10.1016/j.ymgmr.2024.101096
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19717
Akaba Y, Takahashi S, Suzuki K, Kosaki K, Tsujimura K.
miR-514a promotes neuronal development in human iPSC-derived neurons
Front Cell Dev Biol
2023
11:1096463
PubMed ID: 36824367
DOI: 10.3389/fcell.2023.1096463
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21283
Abdalkader R, Chaleckis R, Fujita T.
Early Differentiation Signatures in Human Induced Pluripotent Stem Cells Determined by Non-Targeted Metabolomics Analysis.
Metabolites
2023
13(6)
PubMed ID: 37367864
DOI: 10.3390/metabo13060706
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|
21311
Kaneko H, Kaitsuka T, Tomizawa K.
Artificial induction of circadian rhythm by combining exogenous BMAL1 expression and polycomb repressive complex 2 inhibition in human induced pluripotent stem cells.
Cell Mol Life Sci
2023
80(8):200
PubMed ID: 37421441
DOI: 10.1007/s00018-023-04847-z
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21405
Murata H, Phoo MTZ, Ochi T, Tomonobu N, Yamamoto KI, Kinoshita R, Miyazaki I, Nishibori M, Asanuma M, Sakaguchi M.
Phosphorylated SARM1 is involved in the pathological process of rotenone-induced neurodegeneration.
J Biochem
2023
PubMed ID: 37725528
DOI: 10.1093/jb/mvad068
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21492
Mae SI, Hattanda F, Morita H, Nozaki A, Katagiri N, Ogawa H, Teranaka K, Nishimura Y, Kudoh A, Yamanaka S, Matsuse K, Ryosaka M, Watanabe A, Soga T, Nishio S, Osafune K.
Human iPSC-derived renal collecting duct organoid model cystogenesis in ADPKD.
Cell Rep
2023
113431
PubMed ID: 38039961
DOI: 10.1016/j.celrep.2023.113431
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20400
Suezawa T, Kanagaki S, Moriguchi K, Masui A, Nakao K, Toyomoto M, Tamai K, Mikawa R, Hirai T, Murakami K, Hagiwara M, Gotoh S.
Disease modeling of pulmonary fibrosis using human pluripotent stem cell-derived alveolar organoids.
Stem Cell Reports
2021
PubMed ID: 34798066
DOI: 10.1016/j.stemcr.2021.10.015
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